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| 产品编号 | 包装 | 价格 |
| 110000-L | 30ml | 46.00 |
| 110000-L1 | 70ml | 86.00 |
| 110000-L2 | 120ml | 150.00 |
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WIP组织细胞裂解液 |
30ml |
70ml |
120ml |
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PMSF(100X) |
0.3ml |
0.7ml |
1.2ml |
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使用说明书 |
1份 | ||
保存条件
-20℃保存,一年有效。
使用说明
1.培养细胞
取出WIP裂解液,待融化后颠倒混匀数次,适量分装冻存。在使用前取出PMSF(100mM),按比例加入(使其最终浓度为1mM)混匀,立即使用。
贴壁细胞,去除培养液,用PBS、生理盐水或无血清培养液洗2-3遍(如血清中的蛋白没有干扰,也可以不洗)。按6孔板每孔加入100-200微升的比例加入WIP。用枪吹打数下,使WIP和细胞充分接触。通常WIP接触细胞数秒后细胞就会被裂解。
悬浮细胞,收集培养细胞,离心去除培养液,用PBS、生理盐水或无血清培养液洗2-3遍(如血清中的蛋白没有干扰,也可以不洗),用手指把细胞用力弹散,按6孔板每孔细胞加入100-200微升的比例加入WIP。如果细胞数量较大,应按50-100万细胞/管分装或根据细胞数量按比例增加WIP。用手指轻弹管底以促进WIP和细胞充分接触,裂解完全时应无明显的细胞颗粒。
裂解物经10,000-14,000g离心3-5分钟,取上清,即可进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
裂解液用量说明:通常6孔板每孔细胞加入100微升裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到150微升或200微升。
2.组织样品
取Ep管,分别称重标记,把组织剪切成小块装入Ep管中,称重。按每20毫克组织加100-200微升的比例加入WIP(如裂解不完全,可以适当增加WIP的用量;如需要的蛋白样品浓度较高,可以适当减少WIP的用量)。用手握式电动组织细胞匀浆器匀浆约1分钟或直至充分裂解。10,000-14,000g离心3-5分钟,取上清,即可进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
如果组织样品本身非常细小,如淋巴细胞,可直接加入WIP裂解,通过振荡(Vortex)以使样品裂解完全。
注意事项
1.为获得最佳的实验效果,可适当分装使用,以尽量避免反复冻融。
2.PMSF应现用现加。
3.裂解蛋白的所有步骤都需在冰上或4℃进行。
4.蛋白酶抑制剂均有较高的毒性,为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。一旦直接接触,请立即用流水冲洗,再向医疗保健结构咨询。
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